Outil de laboratoire
Calculateur de reconstitution
Saisissez la masse contenue dans le flacon et le volume de diluant que vous prévoyez d’ajouter. Le calculateur indique la concentration obtenue et ce que délivre chaque graduation d’une seringue à insuline standard.
Eau bactériostatique pour les flacons à prélèvements multiples ; eau stérile pour un usage unique.
Utilisez une virgule ou un point pour les décimales.
Concentration obtenue
5 000 mcg / mL
5 mg per mL
- Par unité de seringue
- 50 mcg
- Seringue pleine
- 5 000 mcg
- Contenu du flacon
- 200 units total
Calcul à rebours à partir d’une cible
Si vous connaissez la quantité souhaitée par unité de seringue, cet outil vous indique le volume de diluant à ajouter.
Volume de diluant à ajouter
0,4 mL
Notes de manipulation
Quel diluant utiliser pour reconstituer un peptide lyophilisé ?
L’eau bactériostatique est le choix habituel pour les flacons à prélèvements multiples, car l’alcool benzylique limite la croissance microbienne entre les prélèvements. L’eau stérile convient aux préparations à usage unique. Les peptides peu solubles en milieu aqueux peuvent nécessiter d’abord un petit volume d’acide acétique dilué ou d’un autre co-solvant, ajouté avant l’essentiel du diluant.
Comment ajouter le diluant dans le flacon ?
Dirigez le jet le long de la paroi intérieure du flacon plutôt que directement sur le gâteau de poudre, et laissez le produit se dissoudre sans agitation. Faites tourner doucement si nécessaire. Une agitation vigoureuse provoque un cisaillement et de la mousse susceptibles de dénaturer le peptide en solution.
Combien de temps un peptide reconstitué reste-t-il utilisable ?
Une fois en solution, conservez-le entre 2 et 8 °C à l’abri de la lumière et travaillez dans la fenêtre d’étude prévue plutôt que de garder la solution indéfiniment. La stabilité en solution est nettement plus courte que celle de la poudre lyophilisée scellée, stable pendant de longues périodes à −20 °C.
Pour aller plus loin
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