Spedizione gratuita oltre 250 € — spedizione il giorno lavorativo successivo, tracciata in tutta l'UE, con CoA corrispondente al lotto.

it

Guide alle molecole

Peptidi di ricerca: che cosa sono e come sceglierli

Come scegliere un peptide di ricerca: sequenza e modifiche, purezza HPLC vs contenuto peptidico, sale TFA vs acetato, specie, solubilità e conservazione.

4 minuti di letturaScritto per acquirenti di laboratorio e ricercatori

I peptidi di ricerca sono catene sintetiche di amminoacidi fornite come polvere liofilizzata per uso di laboratorio: ligandi recettoriali, calibratori per saggi, immunogeni, peptidi bloccanti e substrati per proteasi. Sono il tipo di prodotto più ampio del catalogo di ricerca e il punto di riferimento per ogni altro tipo — i peptidi marcati sono queste molecole con un tag, gli anticorpi vengono prodotti contro di esse e i kit di dosaggio sono calibrati con esse. Sceglierne uno correttamente si riduce a cinque specifiche: sequenza e modifiche, purezza, contenuto peptidico, forma salina e specie.

Come si produce un peptide di ricerca e perché è importante

Quasi tutto ciò che si trova in questo catalogo è prodotto mediante sintesi peptidica in fase solida: la catena viene assemblata un residuo alla volta su una resina, con le catene laterali protette da gruppi protettori, quindi staccata, deprotetta e purificata mediante HPLC preparativa. Ne derivano direttamente tre conseguenze. L'efficienza di sintesi diminuisce con la lunghezza, per cui i peptidi oltre circa 50 residui diventano costosi e più difficili da purificare — le sequenze più lunghe sono spesso ricombinanti. Il distacco utilizza acido trifluoroacetico, per cui il prodotto arriva come sale TFA se non viene scambiato. E i prodotti di fallimento sono sequenze di delezione che differiscono per un residuo, motivo per cui la purezza è espressa mediante HPLC e l'identità è confermata separatamente mediante spettrometria di massa.

Purezza e contenuto: la distinzione che cambia i numeri

Si tratta di valori distinti, e confonderli è l'errore di quantificazione più comune nel lavoro con i peptidi. La purezza — dal cromatogramma HPLC — è la proporzione del materiale di natura peptidica che corrisponde alla sequenza bersaglio. Il contenuto peptidico — dall'analisi degli amminoacidi o dalla determinazione dell'azoto — è la proporzione della massa totale del flaconcino che è effettivamente peptide. Un flaconcino etichettato 1 mg con purezza del 98% e contenuto dell'80% contiene circa 0.8 mg di peptide, non 0.98 mg. Ricostituire in base alla massa lorda sovrastima quindi la concentrazione di circa il 20%, errore che si propaga a ogni valore derivato. Per il lavoro qualitativo raramente ha importanza; per una curva standard o una potenza riportata è determinante. Purezza HPLC spiegata e la guida al COA trattano entrambi i valori su un certificato reale.

Modifiche e perché il catalogo le elenca come prodotti distinti

Una modifica non è una variante dello stesso articolo — è una molecola diversa, con un peso molecolare diverso e spesso una farmacologia diversa. L'amidazione C-terminale riproduce la forma naturale processata della maggior parte dei neuropeptidi ed è necessaria per la piena attività recettoriale in famiglie come NPY, CGRP e sostanza P. L'acetilazione N-terminale blocca l'attacco delle amminopeptidasi ed elimina la carica positiva a quell'estremità. I ponti disolfuro definiscono il ripiegamento di defensine, somatostatina ed endotelina, e una versione lineare ridotta si comporta diversamente. Anche la formazione di piroglutammato, la fosforilazione, la biotinilazione e la sostituzione con D-amminoacidi creano allo stesso modo voci di catalogo separate. La lettura di una sequenza peptidica spiega la notazione con cui sono scritte.

Intero, frammento o analogo

La maggior parte delle pagine di famiglia offre tutte e tre le opzioni, che rispondono a domande diverse. Il peptide nativo intero è la scelta corretta per curve standard, quantificazione e lavoro con agonisti fisiologici. Un frammento è di solito uno strumento per sottotipi recettoriali: CGRP(8–37) è un antagonista, PYY(3–36) è selettivo per Y2, AgRP(83–132) è il nucleo attivo. I frammenti non sono sostituti più economici del peptide originario. Un analogo — con D-amminoacidi, stapled, PEGilato o altrimenti stabilizzato — scambia l'identità nativa con stabilità o selettività, ed è appropriato quando un peptide deve resistere a un'incubazione in plasma o a un protocollo in vivo più lungo. Consultare la pagina del tipo per ciò che esiste in una data famiglia, e il tipo librerie peptidiche quando occorre un set sistematico anziché singole sequenze.

Ricostituzione, solubilità e conservazione

La solubilità è determinata dalla sequenza, non dalle aspettative. I peptidi idrofili fortemente carichi si sciolgono direttamente in acqua o tampone; i peptidi basici in acido acetico diluito, quelli acidi in idrossido di ammonio diluito; le sequenze idrofobe richiedono in genere prima DMSO o acetonitrile, poi la diluizione in tampone acquoso. Verificare il punto isoelettrico — la solubilità è minima in sua prossimità. I passaggi pratici sono in solubilità dei peptidi e nella guida alla ricostituzione; i calcoli di molarità sono in peso molecolare e moli.

La conservazione è più semplice. I flaconcini liofilizzati sigillati si conservano per anni a −20 °C o meno, al riparo da luce e umidità — lasciare sempre che il flaconcino raggiunga la temperatura ambiente prima di aprirlo, altrimenti la condensa porterà acqua nella polvere. Il peptide ricostituito è molto meno stabile: aliquotare subito in volumi monouso e congelare, evitando ripetuti cicli di congelamento–scongelamento. I residui di metionina, cisteina e triptofano si ossidano in soluzione, per cui ridurre al minimo lo spazio di testa e l'esposizione alla luce. Si vedano la guida alla conservazione, la guida all'aliquotazione e gli errori comuni di ricostituzione.

Il ruolo dei peptidi di ricerca rispetto agli altri tipi di prodotto

Usare uno standard peptidico quando occorre applicare una quantità nota, calibrare un saggio, oppure produrre o assorbire un anticorpo. Aggiungere un peptide marcato quando la rivelazione richiede un tag — saggi di legame, imaging, substrati per proteasi. Ordinare un anticorpo quando occorre rilevare la molecola endogena nel tessuto o su un blot. Ordinare un kit di dosaggio quando la domanda è quanta parte di peptide endogeno sia presente in un campione. Si parta dall'indice del catalogo o da un'area tematica come neuropeptidi, diabete o oncologia. Tutti i peptidi del catalogo sono forniti esclusivamente per la ricerca in vitro e su animali autorizzata.

Domande

Una purezza del 95% è sufficiente?

Per la maggior parte dei saggi cellulari, degli immunogeni e del lavoro qualitativo, sì. Per standard quantitativi, farmacologia recettoriale e qualsiasi applicazione in cui conti una concentrazione riportata, scegliere ≥98%. La piccola percentuale residua è costituita di solito da sequenze di delezione che differiscono per un residuo e che possono mantenere un'attività parziale — per questo una purezza più elevata conta di più per le misure di potenza che per la rivelazione.

Perché il flaconcino pesa più della quantità di peptide dichiarata?

Perché la quantità dichiarata si riferisce al peptide, mentre il flaconcino contiene anche il sale del controione e acqua residua — tipicamente il 10–30% della massa lorda. È il valore del contenuto peptidico riportato sul certificato di analisi. Ricostituire in base alla massa lorda del flaconcino sovrastima di conseguenza la concentrazione; per il lavoro quantitativo si usi il valore del contenuto.

Quando serve il sale acetato anziché il TFA?

Per colture cellulari, saggi antimicrobici e protocolli su animali. Il trifluoroacetato residuo è citotossico e antimicrobico nell'intervallo micromolare usato in questi saggi, confondendo le letture di vitalità e di MIC. Lo scambio salino ad acetato è una richiesta standard. Per saggi di legame e standard analitici, il sale TFA è generalmente accettabile.

Come si può sapere che il peptide è davvero la sequenza ordinata?

Dalla spettrometria di massa riportata sul certificato di analisi. La massa osservata dovrebbe corrispondere alla massa monoisotopica o media teorica della sequenza, incluse le modifiche, entro la tolleranza dello strumento. L'HPLC indica quanta parte del materiale è costituita da una sola specie; solo la MS indica di quale specie si tratti. Si veda spettrometria di massa e identità dei peptidi.

Si può ricongelare un peptide ricostituito?

Si può, ma ogni ciclo comporta una perdita di materiale per aggregazione e degradazione, e la perdita dipende dalla sequenza e viene misurata di rado. Aliquotare in volumi monouso alla prima ricostituzione elimina del tutto il problema e limita inoltre la contaminazione da ripetute perforazioni del setto. È la pratica di laboratorio standard.

I peptidi di ricerca sono sterili?

No, salvo che un articolo specifico indichi diversamente. I peptidi di ricerca liofilizzati non sono filtrati sterilmente, non sono testati per le endotossine e non sono prodotti in condizioni farmaceutiche. I protocolli che richiedono sterilità necessitano di filtrazione al momento dell'uso, con la conseguente perdita di peptide. Sono forniti esclusivamente per la ricerca in vitro e su animali autorizzata.